The pemeriksaan tinja adalah suatu studi laboratorium di mana tinja (kotoran) diperiksa untuk mendeteksi parasit usus. Ini adalah salah satu teknik laboratorium paling sederhana dan tertua, yang pada awalnya dikembangkan oleh Anton Van Leeuwenhoek pada abad ke-18.
Anton Van Leeuwenhoek, yang dianggap sebagai bapak mikrobiologi, menggunakan metode coproparasitoscopic "langsung" untuk mengamati fesesnya sendiri dan menjelaskan apa yang bertahun-tahun kemudian diidentifikasi sebagai trofozoit dari Giardia lamblia, protozoa yang menyerang usus kecil manusia.
Ascaris lumbricoides bentuk dewasa (Sumber: Wikimedia Commons)
Penyakit parasit menyerang jutaan orang di dunia, terutama di negara-negara miskin atau terbelakang, di mana terdapat kondisi sanitasi yang buruk terkait dengan pembuangan kotoran dan konsumsi air yang terkontaminasi.
Diagnosis penyakit ini penting untuk pengobatan yang memadai, karena pemeriksaan koproparasitoskopik merupakan alat yang sangat diperlukan untuk itu. Ini adalah tes laboratorium yang sederhana, cepat dan murah.
Pemeriksaan feses mencakup beberapa teknik yang, selain memungkinkan visualisasi dan kuantifikasi langsung telur, trofozoit, kista, atau larva, memungkinkan struktur mikroorganisme diidentifikasi dan dengan demikian dapat mengidentifikasi parasit.
Teknik yang digunakan untuk pemeriksaan koproparasitoskopik antara lain teknik pewarnaan metilen biru, metode konsentrasi, teknik Faust, teknik Richie, teknik sedimentasi, dan pemeriksaan langsung, tunggal, atau serial.
Telur Ascaris lumbricoides yang tidak dibuahi. (Sumber: Pusat Pengendalian dan Pencegahan Penyakit, melalui Wikimedia Commons).
Contoh
Untuk melakukan penelitian ini, pasien diharuskan mengambil sampel feses yang masih segar yang tidak terkontaminasi urine, air, darah (menstruasi) atau tanah. Sampel harus seukuran kenari atau, jika cair, volume harus setidaknya sesuai dengan dua sendok makan.
Pasien tidak boleh meminum obat parasiticidal setidaknya selama tiga hari sebelum mengambil sampel atau selama periode yang ditentukan oleh dokter mereka. Anda juga tidak boleh menggunakan obat pencahar.
Sampel harus ditempatkan dalam wadah kering, bermulut lebar, berpenutup atau wadah sekali pakai yang dirancang khusus (tersedia di apotek pilihan Anda). Sampel harus ditempatkan di lingkungan yang sejuk, tidak boleh disimpan di lemari es lebih dari 24 jam, dan tidak boleh disimpan di dekat sumber panas atau dibekukan.
Jika pemeriksaan yang ditunjukkan bersifat serial, setidaknya diperlukan tiga sampel, yang harus diambil setiap 24 jam atau lebih, seperti yang ditunjukkan oleh dokter. Untuk kasus ini, laboratorium biasanya menyediakan satu set termos berisi larutan dengan pengawet.
Ketika pasien melihat adanya “cacing” di dalam feses, jika memungkinkan, ia harus meletakkannya di botol tertutup berisi air dan membawanya ke laboratorium bersama dengan botol sampel feses.
Botol dengan sampel atau dengan "cacing" harus diberi label dan diidentifikasi dengan nama pasien, umurnya, jenis kelamin dan tanggal dan waktu pengambilan sampel.
Sangat penting untuk menginstruksikan pasien secara memadai tentang semua aspek pengambilan dan penanganan sampel, karena ini tergantung pada apakah elemen yang mungkin ada dalam sampel tersebut tetap layak untuk observasi, identifikasi dan diagnosis.
Teknik
Ada pemeriksaan koproparasitoskopik langsung dan teknik suspensi dan konsentrasi sampel yang digunakan berkali-kali untuk menghindari negatif palsu dan mengamati sampel yang jauh lebih bersih. Beberapa teknik pewarnaan juga digunakan untuk mengidentifikasi parasit tertentu.
Ujian langsung
Pemeriksaan feses langsung dengan teknik pending drop terdiri dari pengenceran sampel tinja dengan larutan fisiologis (NaCl 0,9%) dan meneteskan larutan ini pada cekungan yang memiliki kaca bekas khusus. untuk tujuan itu.
Setelah tetesan ditempatkan pada slide, itu ditutup dengan kaca penutup dan diamati di bawah mikroskop. Teknik ini memungkinkan kita untuk mengamati telur dan kista, tetapi juga memungkinkan kita untuk mengamati elemen bergerak apa pun seperti flagelata, larva, trofozoit, ciliata, dll.
Teknik suspensi dan konsentrasi
Teknik suspensi menggunakan larutan yang lebih padat dari elemen yang diamati, sehingga mengapung di permukaan cairan dan dapat dikumpulkan, karena tetap terkonsentrasi di lapisan permukaan larutan.
Teknik ini memiliki keuntungan yaitu memungkinkan pengambilan sampel kotoran yang cukup bersih, karena lebih padat, tetap berada di dasar botol. Kerugian relatifnya adalah larutan tersebut menyusut dan mengubah bentuk mikroorganisme dalam waktu singkat.
Metode ini tidak digunakan untuk telur cacing dan cestode karena sangat berat dan tidak mengapung dalam larutan ini. Mereka banyak digunakan untuk mengamati protozoa dalam bentuk tropozoikum atau telurnya dan untuk pengamatan larva seperti yang ada di Strongyloides stercoralis.
Teknik lain yang banyak digunakan karena tidak merusak mikroorganisme dalam sampel serta sederhana dan murah adalah teknik sedimentasi formalin.
Contoh teknik konsentrasi termasuk teknik Faust dan Richie.
Teknik berbeda yang memungkinkan visualisasi mikroskopis dari telur, larva atau elemen lain dari parasit usus yang berbeda, dikombinasikan dengan teknik pewarnaan, memungkinkan identifikasi dan diagnosis penyakit ini.
Contoh
Selanjutnya, kasus klinis dijelaskan dan beberapa gambar ditampilkan yang menggambarkan kegunaan pemeriksaan feses untuk diagnosis dan evaluasi manfaat pengobatan.
Telur Trichuris trichuria (Sumber: CDC / Dr. Mae Melvin, Courtesy: Public Health Image Library via Wikimedia Commons)
Seorang pasien laki-laki berusia 18 tahun datang ke kantor dokter untuk sakit perut kolik, lebih hebat di daerah periumbilikalis, mual, dan episode diare berair.
Saat menanyai pasien, dokter mencatat dua poin penting: 1) pasien melaporkan pernah mandi di danau di daerah pedesaan dan 2) dia terkejut dengan fakta bahwa tinja mengapung di toilet. Setelah memeriksa pasien, dokter mencurigai adanya Giardia lamblia.
Siklus hidup Giardia lamblia (Sumber: LadyofHats via Wikimedia Commons)
Protozoa ini hidup di usus kecil manusia dan mengganggu penyerapan lemak, yang menghasilkan tinja sangat berminyak yang cenderung mengapung. Polusi sering terjadi dari air yang tercemar di danau atau sungai di daerah pedesaan atau dari kolam atau bak air panas yang tidak terawat dengan baik.
Giardia lamblia trophozoites (Sumber: Foto oleh Eva Nohýnková, Department of Tropical Medicine, 1st Faculty of Medicine, Charles University in Prague and Hospital Bulovka, Czech Republic. Gambar dalam makalah oleh Marie Lipoldova, Laboratory of Molecular and Cellular Immunology, Institute of Molecular Genetika, Akademi Ilmu Pengetahuan Republik Ceko, Praha, Republik Ceko melalui Wikimedia Commons)
Dokter memerintahkan pemeriksaan tinja dan hasilnya memastikan keberadaan Giardia lamblia. Setelah perawatan berakhir, pemeriksaan feses lain diindikasikan untuk memastikan tidak adanya kista atau trofozoit dari Giardia lamblia.
Referensi
- Buonfrate, D., Mena, MA, Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & Kelompok Studi Proyek COHEMI. (2015). Prevalensi strongyloidiasis di Amerika Latin: tinjauan sistematis literatur. Epidemiologi & Infeksi, 143 (3), 452-460.
- oleh Haro Arteaga, I., & Ruiz, AEC (2014). Diagnosis. Parasitologi medis (4a, 347.
- Mendoza, D., Nunez, FA, Escobedo, AA, Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., & Cordovi, RA (2003). Kegunaan 2 metode koproparasitologis dan pemanfaatannya dalam uji coba terapi antigiardiasis. Jurnal Kedokteran Tropis Kuba, 55 (3), 174-178.
- Harga, -DL (2017). Manual prosedur untuk diagnosis parasit usus. CRC Press.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M., & Orhan, R. (1984). Sebuah studi copro-parasitological pada pegulat tim nasional. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114-118.